Критидиоз — Диагноз |
Диагноз. Для выявления паразитов в ветеринарную лабораторию высылают 20-30 живых, подозрительных в заболевании, пчел. Предварительно проводят микроскопию нативной суспензии в затененном поле зрения или с помощью фазово-контрастного устройства микроскопа. В капле суспензии, приготовленной из растертого в ступке с физраствором тонкого и толстого отделов кишечника пораженных пчел, видны (увеличение 400 раз) очень подвижные веретеновидные формы. В последующем проводят исследование окрашенных препаратов. Из выделенных участков тонкой и передней части прямой кишки готовят тонкий мазок, который сушат при комнатной температуре в течение суток, фиксируют метиловым спиртом (3-5 мин) или спирт-эфиром (15-20 мин), красят по Романовскому краской Гимза 45-60 мин. Лэнгридж (1972) рекомендует держать мазки в красителе в течение ночи или проводить окраску несколько часов при 35-50 °С в термостате. Краску сливают, мазки промывают водой и сушат. Под иммерсионной системой микроскопа видны характерные формы паразитов со специфическим набором органелл. В качестве среды для выращивания критидии можно использовать следующий состав: пептон и глюкоза — по 0,5 г, лимонная кислота — 0,2 г, сульфат магния — 0,02 г, бифосфат калия — 0,05 г, дистиллированная вода — 100 мл. Добавление в среду 3 % (по массе) пыльцы улучшает культивирование жгутиконосцев. Cr mellificae культивировали на среде, состоящей из агара (1,4 %) с добавлением гепаризированной крови цыпленка (25- 29 %) и надосадочной жидкости среды Коуперсуайта (рН 5,2). Перед высевом материала его подвергают очистке: суспензию кишечника, приготовленную на физрастворе с добавлением антибиотиков для подавления микрофлоры, помещают в U-образные трубки и отстаивают. Из надосадочной жидкости делают посевы. |
Comments are closed, but trackbacks and pingbacks are open.